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地高辛(DIG)原位杂交试剂盒

发布日期:2020/1/21 13:54:16

背景[1-6]

地高辛(DIG)原位杂交试剂盒是一款利用非放射标记物地高辛(DIG)的原位杂交试剂盒。地高辛标记技术源于一种从洋地黄类植物(毛地黄和毛花毛地黄)中提取的类固醇物质——Digoxigenin(DIG)。由于洋地黄植物的花和叶片Digoxigenin在自然界中的唯一来源,因此抗DIG的抗体不会与其他的生物物质结合,从而可以满足特异性标记的需要。

这一点,正是DIG胜于生物素(Biotin)的地方——同样是小分子标记物,生物素广泛存在于各种组织中,对于灵敏度很高的标记检测实验来说,样品自身含有的内源生物素,就会对结果产生干扰。地高辛就能够很好地避免这个问题。

DIG通过一个含有11个碳原子的空间臂与尿嘧啶核苷酸上的C5位置相连,一定浓度的DIG标记的核苷酸可以通过DNA polymerase(如E.coli DNA Polymerase,T4 DNA Polymerase,T7 DNA Polymerase,Reverse Transcriptase,Taq DNA Polymerase)、RNA polymerase(如SP6,T3或T7 RNA Polymerase)或是末端转移酶(Terminal Transferase)的作用掺入到核苷酸探针中;也可通过随即引物标记(random primed labeling),缺口平移(nick translation),PCR,3’端标记/加尾或是体外转录制备带有DIG标记的探针。当然也可以通过化学合成的方法进行核苷酸的标记。

对于DIG标记探针的杂交检测,可选用连接有碱性磷酸酶(alkaline phosphatase),过氧化物酶(peroxidase),荧光素(fluorescein),若丹明(rhodamine)或是胶体金(colloidal gold)高亲和性的抗DIG抗体共轭物;也可选用不带任何共轭连接的抗DIG抗体和二级抗体。

检测的灵敏度主要依赖于对不同抗DIG抗体共轭物显示方法的选择。以连接有碱性磷酸酶的抗DIG抗体为例:即可以使用NBT或BCIP做底物的显色法,也可以使用HNPP荧光碱性磷酸酶底物,检测的灵敏度常规可达到0.1pg(Souther blot)。所谓DNA探针,实质上是一段已知的基因片段,应用这一基因片段即可与待测样品杂交。

如果靶基因和探针的核苷酸序列相同,就可按碱基配对原则进行核酸分子杂交,从而达到检查样品基因的目的。在随机引物法标记反应液中,有随机合成的六聚体核昔酸(hexanucleotide)作为引物,dATP、dCTP、dGTP、dTTP和D1G-11-dUTP作为合成底物,以单链DNA作为模板,在Klenow酶的作用下,合成掺入地高辛的DNA链。以地高辛标记的探针与靶基因DNA链杂交后,再通过免疫反应来进行检测。一般通过酶标抗地高辛抗体来检测,就可以肯定杂交反应的存在。免疫检测一般用碱性磷酸酶系统,BC1P/NBT显色。敏感性很高。可用于膜上杂交和原位杂交。

地高辛(DIG)原位杂交试剂盒特点:

(1)标记属高效标记反应。以1μgDNA探针为例,1小时反应即可产生0.8μg标记探针,20小时可产生2μg左右的标记探针。

(2)试剂将标记反应所需的引物、核苷酸、DIG-11dUTP和Klenow酶等混合在一起。一次标记只需吸取一次标记液,使用至为简便。

(3)标记反应适于下述对象:a.DNA从10ng—3μg。b.不等的DNA长度100bp—10kb。c.线形排列或呈高度卷曲之DNA。d.低融点琼脂中的DNA。

(4)检测系统抗体为抗地高辛单抗,标记碱性磷酸酶。效价1:5000(膜上杂交)或1:500(原位杂交)。

(5)显色剂为BCIP/NBT,两种成分混合后保存于67%DMF中,非常稳定。用时1:50稀释。

(6)试剂盒敏感性达到0.1pg,足够检测出1μg基因组DNA中的单个基因。

(7)除用于各种膜上杂交之外,还可用于原位杂交(ISH)。

应用[7]

地高辛(DIG)原位杂交试剂盒可用于DNA 探针的随机引物标记及各种膜上杂交和原位杂交。

例如在地高辛标记探针原位杂交检测猪延髓TPH2 mRNA的表达的研究中采用PCR法对猪TPH2 cDNA探针进行地高辛(digoxigenin,DIG)标记,应用核酸分子原位杂交技术检测猪延髓组织内TPH2 mRNA的表达。结果表明:地高辛标记的TPH2cDNA探针使用简便,灵敏度高,特异性强,杂交结果直观,探针保存时间较长,无放射性污染;猪延髓组织内的血管壁、蛛网膜、下橄榄核区与极后区的神经元均有阳性反应,TPH2 mRNA的表达较高,提示了TPH2在这些部位的存在与5-HT的转运具有相关性。

参考文献

[1]Structure and function of the aromatic amino acid hydroxylases.Hufton,SE,Jennings,IG,Cotton,RG.Biochemical Journal.1995

[2]Tetrahydropterin-dependent amino acid hydroxylases.Fitzpatrick,P.F.Annual Review of Biochemistry.1999

[3]Tissue-specific glucocorticoid regulation of tryptophan hydroxylase mRNA levels.Clark MS,Russo AF.Brain Research Molecular Brain Research.1997

[4]Tryptophan hydroxylase mRNA levels are elevated by repeated imobilization stress in rat raphe nuclei but not in pneal gland.Chamas F,Serova L,Sabban EL.Neuroscience Letters.1999

[5]Glucocorticoid status affects antidepressant regulation of locus coeruleus tyrosine hydroxylase and dorsal raphe tryptophan hydroxylase gene expression.Heydendael W,,Jacobson L.Brain Research.2009

[6]Distribu-tion of tryptophan hydroxylase-immunoreactive neurons in thebrainstem and diencephalon of the pigeon(Columba livia).MENEGHELLI C,ROCHA N H,MENGATTO V,et al.JChem Neuroanat.2009

[7]钱慧慧,何敏,谢玉萍,郑声陶,钟帆,剡海阔,马勇江,邓衔柏.地高辛标记探针原位杂交检测猪延髓TPH2 mRNA的表达[J].黑龙江畜牧兽医,2012(23):8-10+179.

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