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KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞的应用

发布日期:2023/11/15 9:20:14

背景[1-3]

KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞是一种低分化的人食管鳞癌细胞,通常用于研究食管癌的生物学特性、药物筛选和抗肿瘤药物开发等。这种细胞系具有一些特殊的生物学特性,如高度侵袭性、易转移等,为食管癌的研究提供了重要的实验模型。

KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞的保存和运输需遵循一定的低温避光条件,以保证细胞的活性和稳定性。同时,使用这种细胞系进行实验时,需注意以下几点:

KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞培养条件:该细胞系需要在含有一定浓度的血清、抗生素和生长因子的培养基中生长,同时需控制温度、湿度和二氧化碳浓度等条件。

KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞传代方法:KYSE50细胞系的传代方法通常采用胰酶消化法或胶原酶消化法,传代比例根据实验需求进行适当调整。

KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞细胞形态:KYSE50细胞系的形态通常为贴壁生长,呈现圆形或卵圆形,有时可见细胞之间形成突起或形成细胞团。

KYSE50细胞系低分化人食管鳞癌细胞.png

KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞

KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞培养步骤

一.培养基及培养冻存条件准备:

1)准备基础培养基(GIBCO,添加NaHCO3 1.5g/L,丙酮酸钠0.11g/L);优质胎牛血清,10%。

2)KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞培养条件:气相:空气,95%;二氧化碳,5%。温度:37摄氏度,培养箱湿度为70%-80%。

3)KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞冻存液:90%完全培养基,10%DMSO,现用现配。液氮储存。

二.KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞细胞处理:

1)复苏KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞细胞:将含有1mL细胞悬液的冻存管在37℃水浴中迅速摇晃解冻,加入4mL培养基混合均匀。在1000RPM条件下离心4分钟,弃去上清液,补加1-2mL培养基后吹匀。然后将所有细胞悬液加入培养瓶中培养过夜(或将细胞悬液加入10cm皿中,加入约8ml培养基,培养过夜)。第二天换液并检查细胞密度。

2)KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞细胞传代:如果细胞密度达80%-90%,即可进行传代培养。

对于贴壁细胞,传代可参考以下方法:

1.弃去培养上清,用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。

2.加2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培养瓶中,置于37℃培养箱中消化1-2分钟,然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落,迅速拿回操作台,轻敲几下培养瓶后加少量培养基终止消化。

3.按6-8ml/瓶补加培养基,轻轻打匀后吸出,在1000RPM条件下离心4分钟,弃去上清液,补加1-2mL培养液后吹匀。

4.将细胞悬液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培养基的新皿中或者瓶中。

3)KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞细胞冻存:待细胞生长状态良好时,可进行细胞冻存。贴壁细胞冻存时,弃去培养基后加入少量胰酶,细胞变圆脱落后,加入约1ml含血清的培养基后加入冻存管中,再添加10%DMSO后进行冻存。

应用[4-5]

KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞可以用于lncRNA MEG3在p53介导的食管鳞癌细胞增殖和凋亡中的作用

探究lncRNA MEG3在p53介导的食管鳞癌细胞增殖和凋亡中的作用及机制。

方法qPCR检测食管鳞癌患者癌组织、癌旁组织及细胞系中lncRNA MEG3的表达。CCK-8法检测敲低或过表达lncRNA MEG3后Eca-109、TE-1细胞的增殖能力,流式细胞术检测Eca-109、TE-1细胞凋亡。采用RNA免疫沉淀检测lncRNA MEG3与p53相互作用。qPCR检测p53、p21、Bax的mRNA表达,Western blotting检测p53、Bcl-2、Bax、Cleaved-Caspase3、Cyto-C蛋白表达,双荧光素酶报告基因检测p53的转录调节能力。

结果:lncRNA MEG3在食管鳞癌患者及细胞系Eca-109、TE-1、KYSE50细胞系|低分化人食管鳞癌细胞中均低表达。高表达lncRNA MEG3的患者拥有更长的总生存期,在Eca-109和TE-1细胞中敲低lncRNA MEG3,可促进细胞增殖,抑制p53死亡信号通路相关蛋白Bax、Cleaved-Caspase3、Cyto-C蛋白表达,促进Bcl-2表达;过表达lncRNA MEG3则抑制细胞增殖,上调p53转录活性,促进Bax、Cleaved-Caspase3、Cyto-C、p21蛋白表达,同时抑制Bcl-2表达,促进细胞凋亡。结论在食管鳞癌细胞中,lncRNA MEG3与p53蛋白直接结合,从而促进p53的转录调节能力,激活p53下游基因转录,抑制细胞增殖,并促进细胞凋亡。

参考文献

[1]TRMP,a p53-inducible long noncoding RNA,regulates G1/S cell cycle progression by modulating IRES-dependent p27 translation..Yang Yang;;Wang Chenfeng;;Zhao Kailiang;;Zhang Guang;;Wang Decai;;Mei Yide.Cell death&disease,2018

[2]Long Noncoding RNA MEG3 Interacts with p53 Protein and Regulates Partial p53 Target Genes in Hepatoma Cells..Juanjuan Zhu;;Shanshan Liu;;Fuqiang Ye;;Yuan Shen;;Yi Tie;;Jie Zhu;;Lixin Wei;;Yinghua Jin;;Hanjiang Fu;;Yongge Wu;;Xiaofei Zheng.PLoS ONE,2017

[3]The p53-inducible long noncoding RNA TRINGS protects cancer cells from necrosis under glucose starvation..Khan Muhammad Riaz;;Xiang Shaoxun;;Song Zhiyin;;Wu Mian.The EMBO journal,2017

[4]Genetic Alterations in Esophageal Tissues From Squamous Dysplasia to Carcinoma.Xi Liu;;Min Zhang;;Songmin Ying;;Chong Zhang;;Runhua Lin;;Jiaxuan Zheng;;Guohong Zhang;;Dongping Tian;;Yi Guo;;Caiwen Du;;Yuping Chen;;Shaobin Chen;;Xue Su;;Juan Ji;;Wanting Deng;;Xiang Li;;Shiyue Qiu;;Ruijing Yan;;Zexin Xu;;Yuan Wang;;Yuanning Guo;;Jiancheng Cui;;Shanshan Zhuang;;Huan Yu;;Qi Zheng;;Moshe Marom;;Sitong Sheng;;Guoqiang Zhang;;Songnian Hu;;Ruiqiang Li;;Min Su.Gastroenterology,2017

[5]徐蓉,张谦,柳江.lncRNA MEG3在p53介导的食管鳞癌细胞增殖和凋亡中的作用[J].胃肠病学和肝病学杂志,2023,32(05):524-530.

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