CW-2 人结肠癌细胞系的应用

背景^[1-3]

CW-2人结肠癌细胞系来源于结肠癌。CEA阳性，移植于裸鼠可成瘤。

CW-2人结肠癌细胞系

CW-2人结肠癌细胞系细胞复苏、传代及冻存流程参考：

1、CW-2人结肠癌细胞系细胞复苏

1）配制完全培养基：基础培养基+胎牛血清+双抗（特殊培养基特殊配置）；

2）细胞复苏：取5ml完全培养基于15ml离心管中，37℃水浴锅预热，从液氮管（或者-80度冰箱）中快速取出冻存的细胞，放入37℃水浴锅中，摇晃使快速化冻（1min左右），然后将化冻的细胞和预热的培养基，移入超净工作台中，化冻的细胞加入到含预热培养基的15ml离心管中，1000rpm离心5min；

3）吸弃上清，得到细胞沉淀，用2ml完全培养基轻轻重悬细胞，加入到T25培养瓶中，做好标记，放入37℃，5%CO2饱和适度培养箱中培养（培养皿复苏效果更好）；

4）24h后，观察细胞贴壁情况（未贴壁的即为死细胞--针对贴壁细胞），吸弃旧培养基，加入新鲜的预热（室温或37℃）的完全培养基，继续培养。

2、CW-2人结肠癌细胞系细胞传代

1）待细胞生长到80%-90%汇合度时，吸弃旧的培养基，加入1ml无菌PBS润洗一次，以去除残余的培养基及血清（血清含有胰酶的抑制因子），然后加入1ml 0.25%胰酶，37℃培养箱中消化（1~2min左右，不同细胞消化时间不同），取出细胞，镜下观察细胞至细胞皱缩变圆；

2）加入1ml完全培养基（含FBS）终止消化，轻轻拍打，使细胞脱落下来成单个细胞悬液，收集细胞于15ml无菌离心管中，1000rpm，离心5min；

3）收集细胞沉淀，完全培养基重悬，一分为二（可根据细胞生长速度调整比例），分别加入到2个新的培养瓶中，做好标记，放入培养箱中培养。

3、CW-2人结肠癌细胞系细胞冻存

1）按照细胞传代方法，在超净工作台内消化收集细胞沉淀，取少量细胞用于计数；

2）用预冷的1ml冻存液（90%完全培养基+10%DMSO）或者无血清细胞冻存液重悬细胞，加入到1.2ml冻存管中，密度为1*106个/ml。

3）放入程序冻存盒，-80℃过夜后，转入液氮长期保存。

应用^[4][5]

CW-2人结肠癌细胞系可以用于人结肠癌细胞株CW-2干细胞富集方法的比较

比较3种细胞分选方法对人结肠癌细胞株CW-2干细胞的富集效率,探讨获得肿瘤干细胞的有效方法。

方法：采用单纯无血清悬浮培养、无血清悬浮培养+奥沙利铂、无血清悬浮培养+奥沙利铂+流式细胞术(多重联合)分别富集人结肠癌细胞株CW-2干细胞;应用流式细胞术、NOD-SCID小鼠致瘤实验和Transwell侵袭实验比较3种方法的富集效率;分别测量不同时间点(4、7、9、14、21、28d)各组小鼠成瘤情况;免疫组化检测移植瘤中CD44和EPCAM的表达情况。

结果：无血清悬浮培养细胞、无血清悬浮培养+奥沙利铂处理细胞和多重联合分选细胞中具有结肠癌干细胞特性的CD44+EPCAM+细胞,细胞比例分别为57.39%、73.85%、89.57%;多重联合分选细胞接种NOD-SCID小鼠后成瘤时间早、瘤体增长速度快,各时间点体积分别为(209.25±31.54)、(500.00±72.90)、(852.75±157.51)、(2280.00±440.91)、(4897.00±1154.15)、(11070.00±3559.86)mm3,与无血清悬浮培养细胞、无血清悬浮培养+奥沙利铂处理细胞的成瘤能力比较差异有统计学意义(P<0.05);单纯无血清悬浮培养细胞、无血清悬浮培养+奥沙利铂处理细胞和多重联合分选后细胞接种72h后穿过人工基底膜的细胞数分别为(98±7)/视野、(135±7)/视野、(188±6)/视野,3组之间差异有统计学意义(P<0.05);各组移植瘤中均表达CD44和EPCAM。3种分选方法所获得细胞中干细胞含量由高到低为:多重联合分选后细胞、无血清悬浮培养+奥沙利铂处理细胞、单纯无血清悬浮培养细胞。

结论：多重联合法富集肿瘤干细胞的效果明显强于单纯无血清悬浮培养和无血清悬浮培养+化疗药物法,是获得肿瘤干细胞较好的方法。

参考文献

[1]Accumulation of Polyunsaturated Fatty Acids in Euglena and Utilization[J].Masahiro HAYASHI.Journal of Japan Oil Chemists’’Society.

[2]Two distinct classes of prestalk-enriched mRNA sequences in Dictyostelium discoideum.[J].Jermyn K A,Berks M,Kay R R,Williams J G.Development(Cambridge,England).

[3]Geological factors responsible for REY-rich mud in the western North Pacific Ocean:Implications from mineralogy and grain size distributions[J].Junichiro Ohta,Kazutaka Yasukawa,Shiki Machida,Koichiro Fujinaga,Kentaro Nakamura,Yutaro Takaya,Koichi Iijima,Katsuhiko Suzuki,Yasuhiro Kato.GEOCHEMICAL JOURNAL.

[4]The proteome of cholesteryl-ester-enriched versus triacylglycerol-enriched lipid droplets.[J].Khor Victor K,Ahrends Robert,Lin Ye,Shen Wen-Jun,Adams Christopher M,Roseman Ann Nomoto,Cortez Yuan,Teruel Mary N,Azhar Salman,Kraemer Fredric B.PloS one.

[5]刘美,李少林,陈宓等.人结肠癌细胞株CW-2干细胞富集方法的比较[J].第三军医大学学报,2010.