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人卵巢癌细胞的应用

发布日期:2023/6/25 8:46:41

背景[1-3]

人卵巢癌细胞由Trempe G和Old LJ在1973年从一位64岁白人女性卵巢腺癌患者的腹腔积液分离得到。该细胞对肿瘤坏死因子和几种细胞毒性药物(包括白喉毒素、顺铂和阿霉素)耐受。在裸鼠中成瘤,且形成与卵巢原位癌一致的中度分化的腺癌。

人卵巢癌细胞.png

人卵巢癌细胞

人卵巢癌细胞培养操作

1)复苏人卵巢癌细胞:将含有1mL细胞悬液的冻存管在37℃水浴中迅速摇晃解冻,加入4mL培养基混合均匀。在1000RPM条件下离心4分钟,弃去上清液,补加1-2mL培养基后吹匀。然后将所有细胞悬液加入培养瓶中培养过夜(或将细胞悬液加入10cm皿中,加入约8ml培养基,培养过夜)。第二天换液并检查细胞密度。

2)人卵巢癌细胞传代:如果细胞密度达80%-90%,即可进行传代培养。

1.弃去培养上清,用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。

2.加1ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培养瓶中,置于37℃培养箱中消化1-2分钟,然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落,迅速拿回操作台,轻敲几下培养瓶后加少量培养基终止消化。

3.按6-8ml/瓶补加培养基,轻轻打匀后吸出,在1000RPM条件下离心4分钟,弃去上清液,补加1-2mL培养液后吹匀。

4.将细胞悬液按1:2比例分到新的含8ml培养基的新皿中或者瓶中。

3)人卵巢癌细胞冻存:待细胞生长状态良好时,可进行细胞冻存。下面T25瓶为类;

1.人卵巢癌细胞冻存时,弃去培养基后,PBS清洗一遍后加入1ml胰酶,细胞变圆脱落后,加入1ml含血清的培养基终止消化,可使用血球计数板计数。

2.4 min 1000rpm离心去掉上清。加1ml血清重悬细胞,根据细胞数量加入血清和DMSO,轻轻混匀,DMSO终浓度为10%,细胞密度不低于1x106/ml,每支冻存管冻存1ml细胞悬液,注意冻存管做好标识。

3.将冻存管置于程序降温盒中,放入-80度冰箱,2个小时以后转入液氮灌储存。记录冻存管位置以便下次拿取。

应用[4][5]

人卵巢癌细胞可以用于人参皂苷Rg3抑制人卵巢癌细胞SKOV3侵袭的机制研究

观察人参皂苷Rg3对人卵巢癌细胞SKOV3侵袭作用的影响,并进一步探讨其机制。

方法:以生理盐水为对照组,用浓度为12.5μmol/L(低剂量组)、25μmol/L(中剂量组)和50μmol/L(高剂量组)的人参皂苷Rg3分别处理体外培养的人卵巢癌SKOV3细胞24h,采用MTT检测SKOV3细胞增殖活性,采用Transwell法检测肿瘤细胞的侵袭能力,RT-PCR和Western blot法检测细胞中VEGF、MMP-2和MMP-9蛋白含量,免疫荧光检测NF-κB的核转位。

结果:12.5μmol/L、25μmol/L和50μmol/L的人参皂苷Rg3作用于SKOV3细24h后,其吸光度(OD值)与对照组相比,差异无显著性(P>0.05),对SKOV3细胞的抑制率分别为2.98%、4.47%、7.46%。由此可见12.5μmol/L、25μmol/L和50μmol/L人参皂苷Rg3对SKOV3细胞增殖无明显影响。应用Transwell法检测12.5μmol/L、25μmol/L和50μmol/L浓度人参皂苷Rg3作用24h后SKOV3细胞的侵袭能力,结果显示对照组有85.44±10.52个细胞穿透基底膜,进入侵袭小室下层;Rg3低剂量组有55.28±9.17个细胞进入侵袭小室下层;Rg3中剂量组有27.69±5.65个细胞进入侵袭小室下层;Rg3高剂量组有6.21±2.46个细胞进入侵袭小室下层。

RT-PCR和Western blot结果显示:12.5μmol/L、25μmol/L和50μmol/L浓度人参皂苷Rg3处理24h后VEGF、MMP-2、MMP-9表达较对照组逐渐减少(P<0.05),并且随着Rg3浓度增高,呈现剂量依赖性变化。免疫荧光结果显示:对照组细胞核染色较强,表明NF-κB从胞浆向胞核发生了转移。12.5μmol/L、25μmol/L和50μmol/L浓度人参皂苷Rg3处理24h后,细胞核染色明显下降。

结论:人参皂苷能使人卵巢癌细胞SKOV3的侵袭力下降,其机制与抑制VEGF、MMP-2、MMP-9的表达及抑制NF-κB的转位有关。

参考文献

[1]The C3G/Rap1 pathway promotes secretion of MMP-2 and MMP-9 and is involved in serous ovarian cancer metastasis[J].Ya-Ling Che;;Shu-Juan Luo;;Gang Li;;Min Cheng;;Yi-Meng Gao;;Xue-Mei Li;;Jie-Min Dai;;Huan He;;Jin Wang;;Hui-Juan Peng;;Yu Zhang;;Wen-Yan Li;;Hui Wang;;Bin Liu;;Hua Linghu.Cancer Letters,2015(2)

[2]Prognostic significance of TIMP-2,MMP-2,and MMP-9 on high-grade serous ovarian carcinoma using digital image analysis[J].Patrice Desmeules;;Dominique Trudel;;Stéphane Turcotte;;Jennifer Sirois;;Marie Plante;;Jean Grégoire;;Marie-Claude Renaud;;Michèle Orain;;Bernard Têtu;;Isabelle Bairati.Human Pathology,2015(5)

[3]Prognostic and diagnostic implications of MMP-2,MMP-9,and VEGF-αexpressions in colorectal cancer[J].R.F.Araújo Jr;;G.A.Lira;;J.A.Vila?a;;H.G.Guedes;;M.C.A.Leit?o;;H.F.Lucena;;C.C.O.Ramos.Pathology-Research and Practice,2014

[4]FOXM1(Forkhead box M1)in Tumorigenesis[J].Inken Wierstra.Advances in Cancer Research,2013

[5]蒋丰.人参皂苷Rg3抑制人卵巢癌细胞SKOV3侵袭的机制研究[D].南华大学,2015.

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