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蛋白快速银染试剂盒的应用

发布日期:2023/6/15 8:27:46

背景[1-3]

蛋白快速银染试剂盒是一种快速的可用于SDS-PAGE或非变性PAGE等蛋白银染染色的试剂盒,该试剂盒含有增敏步骤,可明显降低背景。

其优点还在于:

1、操作简单、快速;

2、可用于2D凝胶的银染,并可进行后续的质朴检测;

3、目的条带清晰;

4、不含甲醇。Protein Fast Silver Stain Kit与Protein Silver Stain Kit相比,前者操作速度更快,但检测灵敏度可能低于后者,尤其是在检测小分子量蛋白质的时候。本试剂盒仅用于科研领域,不宜用于临床诊断或其他用途。

蛋白快速银染试剂盒.png

蛋白快速银染试剂盒

蛋白快速银染试剂盒操作步骤:

1.准备工作:以下操作以8.5×5.5cm、厚度为1.0mm的凝胶为例,以凝胶全部浸没到溶液为准,一般用量是25ml,对于凝胶体积较大的,各溶液的使用量需按凝胶体积比例放大。整个银染过程应在摇床上进行,摇床转速控制在60~70rpm。提前配制固定液,即按无水乙醇:冰乙酸:去离子水=5:1:4的比例配制。提前配制洗涤液,即按无水乙醇:去离子水=1:4的比例配制。

2.水洗:电泳结束后,取凝胶放入去离子水中清洗2次,每次5min。

3.固定:取凝胶放入50~100ml固定液中,在摇床上室温摇动15~20min,重复固定步骤1次。

4.洗脱:取凝胶放入洗涤液中清洗2次,每次5min。

5.水洗:去离子水清洗凝胶2次,每次5min。

6.增敏:配制银染增敏工作液,即取Silver Stain Sensitizer(500×)0.1ml加入到50ml去离子水中,混匀,即1×Silver Stain Sensitizer,一般应2h内用完。室温下用1×Silver Stain Sensitizer孵育凝胶2min,立即用去离子水清洗凝胶2次,每次1min。

7.银染:配制银染工作液,即取Silver Stain(100×)0.5ml加入到50ml去离子水中,混匀,即得1×Silver Stain,一般应2h内用完。取凝胶入1×Silver Stain,在摇床上室温摇动10~20min。

8.水洗:弃液,在摇床上用去离子水清洗凝胶2次,每次30s,摇动速度在60~70rpm。总的水洗时间应控制在1.5min内。

9.显影:配制银染显影工作液,即取Silver Stain Developer(5×)10ml加入到40ml去离子水中,混匀,即1×Silver Stain Developer,一般应30min内用完。清洗凝胶后,立即置于1×Silver Stain Developer中,室温孵育2~10min,直至蛋白条带清晰可见。一般显色30s后就会出现棕色沉淀,继续显影2~3min,亦可延长至5min以上,如果显影效果不佳,可重新更换1×Silver Stain Developer继续显影。

10.迅速用去离子水清洗凝胶以避免显影过度,背景染色。立即加入银染终止液,摇床上摇动10min,以终止显色反应。(配制银染终止液,即取Silver Stain Stop Buffer(10×)10ml加入到90ml去离子水中,混匀,即1×Silver Stain Stop Buffer,一般应24h内用完。)

11.保存:弃终止液,加入去离子水50ml,摇床上摇动2~5min,弃液。短期保存于新鲜去离子水,长期保存可以制备干胶。

应用[4][5]

蛋白快速银染试剂盒可以用于苦杏仁蛋白组分鉴别方法研究

研究苦杏仁(Semen Armeniacae Amarum)信息物质——可溶性蛋白组分,建立苦杏仁蛋白组分的鉴定方法,为中药信息物质组分鉴定学的建立提供科学数据和技术。

研究内容和方法:1、总蛋白的含量测定采用Bradford法。对苦杏仁类药材、饮片及其不同制剂条件下的可溶性总蛋白进行了含量测定。

2、苦杏仁蛋白的电泳鉴定方法研究采用SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法。包括对苦杏仁类中药SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳条件(上样量、凝胶浓度、胶片规格、染色方法、脱色程度、凝胶类型)的优选、谱带特征分析、谱带分子量计算、鉴别方法的考察与确定、电泳图谱分析与电泳图谱聚类分析等。

3、苦杏仁类中药SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳鉴别方法的适用性研究分别对炮制品(饮片)和不同入药方式剂型的适用性、鉴别方法的可重复性进行了研究。

研究结果:1、苦杏仁类中药总蛋白含量变化规律为:炒制品<生品<燀制品,含量分别为:苦杏仁:杏(Prunus armeniaca L.)(6.76%,11.53%,13.54%);山杏(Prunus armeniaca L.var.ansu Maxim.)(6.18%,9.67%,14.62%)。桃仁:山桃(Prunus davidiana(Carr.)Franch.)(9.75%,16.81%,17.90%);桃(Prunus persica(L.)Batsch)(9.59%,17.75%,16.28%);甜杏仁:李光杏(A.vularis var.glabras.X.Sun)(7.52%,11.88%,12.73%)。

2、苦杏仁类中药SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳的电泳条件为:凝胶浓度:浓缩胶C=2.6%,T=3.9%;分离胶C=2.6%,T=12%;上样量:20μg(考马斯亮蓝R-250染色),10μg(银染色);恒压电泳U=150V;冷凝回流条件下电泳时效果。

3、确定苦杏仁类中药SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳谱带特征:结合考马斯亮蓝染色和银染色结果,蔷薇科李属的9个种子类供试品,SDS蛋白电泳图共得到39条迁移率不同的谱带,按分子量大小不同,可大致划分为三个特征区组,即高分子量组A(60 kDa105 kDa)、中分子量组B(29 kDa59 kDa)和低分子量组C(10 kDa28 kDa)。其中各供试品在B、C组内均有34条高含量谱带,此二组谱带的具体数目、位置及深浅度显示明显差异,具有鉴别意义。具体鉴别特征的应用可通过分种检索表形式加以实现。

4、得到苦杏仁类中药SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳图谱:电泳图谱中特征峰主要集中在44 kDa 55 kDa和21 kDa 24 kDa两区域内,为苦杏仁类供试品电泳图谱的共有特征;而各供试品在此两组特征峰处的具体峰数目、位置和峰强显示出明显差异,为苦杏仁类供试品电泳图谱的主要鉴别特征区。

5、蛋白质电泳图谱聚类分析结果与植物系统分类基本一致。

6、炮制和制剂过程对苦杏仁类中药SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳高含量谱带影响不显著。因此,在中药品种层次上,炮制方法的改变,或一般制剂工艺过程理论上不影响对中药饮片蛋白组分的鉴别。对具体含苦杏仁中药的制剂的电泳鉴别方法的实践表明:在单制剂中蛋白电泳鉴别法可行,且不受炮制过程影响;在复杂制剂中,可用于桃仁杏仁来源中药的鉴别。

参考文献

[1]Molecular fingerprinting of hybrids and assessment of genetic purity of hybrid seeds in rice using microsatellite markers[J].N.Nandakumar;;A.K.Singh;;R.K.Sharma;;T.Mohapatra;;K.V.Prabhu;;F.U.Zaman.Euphytica,2004(3)

[2]The use of ISSR and RAPD markers for detecting DNA polymorphism,genotype identification and genetic diversity among barley cultivars with known origin[J].M.Fernández;;A.Figueiras;;C.Benito.Theoretical and Applied Genetics,2002(5)

[3]Amplified fragment length polymorphism(AFLP):a review of the procedure and its applications[J].M J Blears;;S A De Grandis;;H Lee;;J T Trevors.Journal of Industrial Microbiology&Biotechnology,1998(3)

[4]An evaluation of the utility of SSR loci as molecular markers in maize(Zea mays L.):comparisons with data from RFLPS and pedigree[J].J.S.C.Smith;;E.C.L.Chin;;H.Shu;;O.S.Smith;;S.J.Wall;;M.L.Senior;;S.E.Mitchell;;S.Kresovich;;J.Ziegle.TAG Theoretical and Applied Genetics,1997(1-2)

[5]王奕洁.苦杏仁蛋白组分鉴别方法研究[D].北京中医药大学,2007.

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