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人细胞周期素D1(CYCLIN-D1)ELISA试剂盒的应用

发布日期:2022/10/25 10:39:29

背景[1-3]

人细胞周期素D1(CYCLIN-D1)ELISA试剂盒用于体外定量检测血清、血浆、组织匀浆及相关液体样本中人细胞周期素D1(CYCLIN-D1)的含量。

实验原理:试剂盒采用双抗体一步夹心法酶联免疫吸附试验(ELISA)。往预先包被人细胞周期素D1(CYCLIN-D1)捕获抗体的包被微孔中,依次加入标本、标准品、HRP标记的检测抗体,经过温育并彻底洗涤。用底物TMB显色,TMB在过氧化物酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的人细胞周期素D1(CYCLIN-D1)呈正相关。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),计算样品浓度。

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人细胞周期素D1(CYCLIN-D1)ELISA试剂盒

样本要求:

1.血清:将收集于血清分离管的全血标本在室温放置2小时或4℃过夜,然后1000×g离心20分钟,取上清即可,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。

2.血浆:用EDTA或肝素作为抗凝剂采集标本,并将标本在采集后的30分钟内于2-8℃1000×g离心15分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。

3.组织匀浆:用预冷的PBS(0.01M,pH=7.4)冲洗组织,去除残留血液(匀浆中裂解的红细胞会影响测量结果),称重后将组织剪碎。将剪碎的组织与对应体积的PBS(一般按1:9的重量体积比,比如1g的组织样品对应9mL的PBS,具体体积可根据实验需要适当调整,并做好记录。推荐在PBS中加入蛋白酶抑制剂)加入玻璃匀浆器中,于冰上充分研磨。为了进一步裂解组织细胞,可以对匀浆液进行超声破碎,或反复冻融。最后将匀浆液于5000×g离心5~10分钟,取上清检测。

4.细胞培养物上清或其它生物标本:请1000×g离心20分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。

操作步骤:

1.从室温平衡20min后的铝箔袋中取出所需板条,剩余板条用自封袋密封放回4℃。

2.设置标准品孔和样本孔,标准品孔各加不同浓度的标准品50μL;

3.样本孔中加入待测样本50μL;空白孔不加。

4.除空白孔外,标准品孔和样本孔中每孔加入辣根过氧化物酶(HRP)标记的检测抗体100μL,用封板膜封住反应孔,37℃水浴锅或恒温箱温育60min。

5.弃去液体,吸水纸上拍干,每孔加满洗涤液(350μL),静置1min,甩去洗涤液,吸水纸上拍干,如此重复洗板5次(也可用洗板机洗板)。

6.每孔加入底物A、B各50μL,37℃避光孵育15min。

7.每孔加入终止液50μL,15min内,在450nm波长处测定各孔的OD值。

实验结果计算

以所测标准品的OD值为横坐标,标准品的浓度值为纵坐标,在坐标纸上或用相关软件绘制标准曲线,并得到直线回归方程,将样品的OD值代入方程,计算出样品的浓度。

应用[4][5]

用于STAT3、VEGF和CyclinD1在人胃癌组织中表达及意义的研究

应用免疫组化技术对胃癌中STAT3、VEGF、CyclinD1的表达水平及意义进行研究,探讨胃正常组织、胃良性病变组织和胃癌中STAT3、VEGF、CyclinD1表达水平的差异及与胃癌组织类型、浸润程度、淋巴结转移及TNM分期等临床病理特征的关系,以及三者之间的相关性,为采取有效方法阻断肿瘤转移、提高疗效、估计预后提供重要的理论依据。

材料和方法:取自手术标本及胃镜活检标本共90例,其中65例胃癌组织,25例胃良性病变组织,30例胃正常组织,其中30例胃正常组织取自胃癌手术标本两断端,经病理证实无癌细胞浸润或癌前病变。术前均未进行化疗或放疗,临床资料完整。应用免疫组化S-P法,检测胃正常组织、胃良性病变组织和胃癌组织中STAT3、VEGF和CyclinD1的表达水平,并观察它们与胃癌组织类型、浸润程度、淋巴结转移及TNM分期等临床病理特征的关系,以及三者之间的相关性,统计学处理采用SPSS 13.0统计软件,计数数据采用χ2检验或Fisher检验,相关分析采用Spearman等级相关。结果P<0.05为有显著性差异。P<0.01为有极显著性差异。

结果:1.在胃癌组织中信号转导和转录活化因子(STAT3)、血管内皮生长因子(VEGF)、细胞周期素D1(CyclinD1)表达阳性率显著高于胃良性病变组织及胃正常组织(P<0.01)。胃正常组织和胃良性病变组织中信号转导和转录活化因子(STAT3)、血管内皮因子(VEGF)、细胞周期素D1(CyclinD1)表达阳性率无明显差别(P>0.05)。

2. 胃癌组织中STAT3表达阳性率在低分化组为89.74%明显高于高、中分化组的40.00%、57.14%(P<0.05),高、中分化组无明显差别(P>0.05);已穿破浆膜组为92.86%明显高于未穿破浆膜组的62.16%(P<0.05);有淋巴结转移组为85.37%明显高于无淋巴结转移组的58.33%(P<0.05);III、IV期组为93.75%和92.31%明显高于I、II期组的60.00%和62.50%(P<0.05),I、II期组无明显差别(P>0.05),III、IV期组无明显差别(P>0.05);性别、组织学类型之间无显著性差异(P>0.05)。

3.胃癌组织中VEGF表达阳性率在低分化组为92.31%明显高于高、中分化组的60.00%和80.95%(P<0.05),高、中分化组无明显差别(P>0.05);已穿破浆膜组为92.86%明显高于未穿破浆膜组的81.08%(P<0.05);有淋巴结转移组为90.24%明显高于无淋巴结转移组的79.17%(P<0.05);III、IV期组为93.75%和92.31%明显高于I、II期组的80.00%和81.25%(P<0.05),I、II期组无明显差别(P>0.05),III、IV期组无明显差别(P>0.05);性别、组织学类型之间无显著性差异(P>0.05)。

参考文献

[1]Specific function of STAT3,SOCS1,and SOCS3 in the regulation of proliferation and survival of classical Hodgkin lymphoma cells[J].DanielaBaus,EdithPfitzner.Int.J.Cancer.2006(6)

[2]Circulating VEGF Levels in the Serum of Gastric Cancer Patients:Correlation With Pathological Variables,Patient Survival,and Tumor Surgery[J].Anastasios J.Karayiannakis,Konstantinos N.Syrigos,Alexandros Polychronidis,Andrew Zbar,Gregory Kouraklis,Constantinos Simopoulos,Gabriel Karatzas.Annals of Surgery.2002(1)

[3]Angiogenesis as a target for gastric cancer[J].Yoshihiro Kakeji,Yoshihiko Maehara,Yasushi Sumiyoshi,Shinya Oda,Yasunori Emi.Surgery.2002(1)

[4]Signaling through the JAK/STAT pathway,recent advances and future challenges[J].T Kisseleva,S Bhattacharya,J Braunstein,C.W Schindler.Gene.2002(1)

[5]王红钰.STAT3、VEGF和CyclinD1在人胃癌组织中表达及意义的研究[D].河北医科大学,2007.

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