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DPN I甲基化模板消化酶的应用

发布日期:2019/12/24 10:19:03

背景[1-6]

DPN I甲基化模板消化酶可有效识别并切断腺嘌呤甲基化的GmATC,而不能切断非甲基化的GATC序列。从(dam+)菌株中提取的质粒因已经被甲基化,可作为Dpn I的底物。该产品可广泛应用于分子克隆、基因分型、DNA印迹、RFLP技术、SNP等多项技术领域。酶切位点:5'GAm6↓TC 3'、3'CT↑Am6G 5'。原核细胞为了保护自己,选择性地降解外源DNA,可保护个体免于外来DNA(如噬菌体)侵入的系统,主要由限制内切酶和甲基化酶组成的二元系统。限制内切酶负责降解进入原核细胞的外源DNA,甲基化酶则对细胞自身的DNA进行甲基化,从而保护细胞的DNA,使其不被自己细胞内的限制性核酸内切酶降解。

除了上述限制性修饰系统,DNA甲基化在调节基因组复制,错配修复和促进/抑制蛋白表达过程中发挥作用。参与这些过程的甲基化酶(如Dam和Dcm甲基化酶)与限制性修饰系统是独立的,但仍然可以影响某些限制性内切酶是否能有效地切开DNA。尽管不是所有的原核DNA有着相同的甲基化水平,但是在酶切消化的时候还是要考虑甲基化的影响。尽管有些甲基化酶不属于限制性修饰系统,但是他们识别的序列和有些内切酶的识别位点重合,从而抑制了这些酶的酶切功能。

比如XbaI的识别序列是TCTAGA,如果在该序列前面有GA紧邻或者该序列后面有TC接着,那么Dam的甲基化作用会使得XbaI切不开该位点。相反地,DpnI酶切要发挥活性则需要DNA发生甲基化。DpnI酶在定点突变中是一个很常用的酶,它一般用于老的DNA模板的去除。而这些老的DNA模板需要从dam+的大肠杆菌中提取才行,这样提取的DNA质粒上的GATC序列会带上甲基化修饰,刚好可以被DpnI酶给消化掉。而通过PCR扩增出来的新的DNA模板则会被保留。

应用[7][8]

DPN I甲基化模板消化酶可用于蛋白激酶CDK8丝氨酸乙酰化及其功能的研究

通过本次试验确认蛋白激酶CDK8丝氨酸位点存在乙酰化修饰,并且进一步探讨蛋白激酶CDK8丝氨酸乙酰化修饰对其磷酸化下游底物CTD结构域的影响。方法:

1.根据Open Resarch结果,确认真核细胞中内源性蛋白激酶CDK8丝氨酸位点的乙酰化:提取293T细胞总蛋白,IP纯化内源性CDK8,通过液-质连用质谱技术(LC-MS/MS)检测所有氨基酸位点乙酰化修饰位点,了解蛋白激酶CDK8丝氨酸乙酰化修饰在功能区的分布状态及比例。

2.检测外源性蛋白激酶CDK8在原核细菌中的丝氨酸的乙酰化修饰:构建PQE30-His-CDK8重组质粒,通过IPTG诱导剂使外源性CDK8质粒在原核细菌BL21中表达,Ni柱纯化外源性CDK8,LC-MS/MS技术检测该蛋白丝氨酸乙酰化修饰情况。

3.检测外源性蛋白激酶CDK8在真核细胞中的丝氨酸的乙酰化修饰:构建PCDNA3.0-Flag-CDK8重组质粒,通过转染技术把质粒导入293T细胞进行表达,免疫沉淀技术纯化外源性CDK8,LC-MS/MS技术检测该蛋白丝氨酸乙酰化修饰。

4.检测蛋白激酶CDK8的丝氨酸乙酰化修饰对其磷酸化功能的影响:①构建PCDNA3.0-Flag-CDK8突变质粒[突变位点是把蛋白激酶CDK810、11位上的丝氨酸分别突变成丙氨酸(A)、天冬氨酸(D)、半胱氨酸(C),通过转染把质粒导入293T细胞表达,免疫沉淀技术纯化外源性CDK8。②构建PQE30-His-CTD质粒,将表达的CTD蛋白与突变的蛋白激酶CDK837℃孵育一小时,LC-MS/MS技术检测CTD蛋白的磷酸化修饰情况。鉴定蛋白激酶CDK8激酶10、11位丝氨酸乙酰化修饰对蛋白激酶CDK8激酶磷酸化功能的影响。

结论1.证实了真核细胞或原核细菌中蛋白激酶CDK8丝氨酸都广泛存在乙酰化修。许多乙酰化修饰位点已被证实可以发生磷酸化修饰,这揭示了丝氨酸位点的乙酰化和磷酸化修饰可能存在竞争关系。2.CDK8第10、11位丝氨酸乙酰化和磷酸化修饰的动态平衡会影响该蛋白对下游底物CTD结构域的磷酸化功能。

参考文献

[1]The two faces of Cdk8,a positive/negative regulator of transcription[J].Josipa Nemet,Branka Jelicic,Ivica Rubelj,Mary Sopta.Biochimie.2014

[2]The cyclin-dependent kinase family in the social amoebozoan Dictyostelium discoideum[J].Robert J.Huber.Cellular and Molecular Life Sciences.2014(4)

[3]Emerging roles of Cdk8 in cell cycle control[J].Zsolt Szilagyi,Claes M.Gustafsson.BBA-Gene Regulatory Mechanisms.2013(9)

[4]High-Throughput Genetic and Gene Expression Analysis of the RNAPII-CTD Reveals Unexpected Connections to SRB10/CDK8[J].Maria J.Aristizabal,Gian Luca Negri,Joris J.Benschop,Frank C.P.Holstege,Nevan J.Krogan,Michael S.Kobor.PLOS Genetics.2013(8)

[5]HIF1A Employs CDK8-Mediator to Stimulate RNAPII Elongation in Response to Hypoxia[J].Matthew D.Galbraith,Mary A.Allen,Claire L.Bensard,Xiaoxing Wang,Marie K.Schwinn,Bo Qin,Henry W.Long,Danette L.Daniels,William C.Hahn,Robin D.Dowell,Joaquín M.Espinosa.Cell.2013(6)

[6]CDK8 Is a Stimulus-Specific Positive Coregulator of p53 Target Genes[J].Aaron Joseph Donner,Stephanie Szostek,Jennifer Michelle Hoover,Joaquin Maximiliano Espinosa.Molecular Cell.2007(1)

[7]A newly discovered post-translational modification–the acetylation of serine and threonine residues[J].Sohini Mukherjee,Yi-Heng Hao,Kim Orth.Trends in Biochemical Sciences.2007(5)

[8]王道光.蛋白激酶CDK8丝氨酸乙酰化及其功能的研究[D].山东大学,2015.

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